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录入时间:2010-11-17 9:43:05 来源:青岛海博

       一、实验目的

  了解原生质体融合技术的原理。

  学习并掌握以细菌为材料的原生质体融合技术。 

二、实验原理

  原核微生物基因重组主要可通过转化、转导、接合等途径,但有些微生物不适于采用这些途径,从而使育种工作受到一定的限制。1978 年第三届国际工业微生物遗传学讨论会上,有人提出微生物细胞原生质体融合这一新的基因重组手段。由于它具有许多特殊优点,所以,目前已为国内外微生物育种工作所广泛研究和应用。

  ()、原生质体融合的优点

  (1)、克服种属间杂交的不育性,可以进行远缘杂交。由于用酶解除去细胞壁,因此,即使相同接合型的真菌或不同种属间的微生物,皆可发生原生质体融合,产生重组子。

  (2)、基因重组频率高,重组类型多。原生质体融合时,由于聚乙二醇(PEG)起促融合的作用,使细胞相互聚集,可以提高基因重组率。原生质体融合后,两个亲株的整套基因组 (包括细胞核、细胞质)相互接触,发生多位点的交换,从而产生各种各样的基因组合,获得多种类型的重组子。

  (3) 可将由其他育种方法获得的优良性状,经原生质体融合而组合到一个菌株中。

  (4) 存在着两个以上亲株同时参与融合,可形成多种性状的融合子。

  ()、原生质体融合步骤

  (1)、选择亲本 选择两个具有育种价值并带有选择性遗传标记的菌株作为亲本。

  (2)、制备原生质体 经溶菌酶除去细胞壁,释放出原生质体,并置高渗液中维持其稳定。

  (3)、促融合 聚乙二醇加入到原生质体以促进融合。聚乙二醇为一种表面活性剂,能强制性的促进原生质体融合。在有Ca2+ Mg2+离子存在时,更能促进融合。

  (4)、原生质体再生 原生质体已失去细胞壁,虽有生物活性,但在普通培养基上不生长,必须涂布在再生培养基上,使之再生。

  (5)、检出融合子 利用选择培养基上的遗传标记,确定是否为融合子。

  (6)、融合子筛选 产生的融合子中可能有杂合双倍体和单倍重组体不同的类型,前者性能不稳定,要选出性能稳定的单倍重组体,反复筛选出生产性能良好的融合子。

  ()、 原生质体再生率和融合率计算 

三、实验材料

  ()、 菌种:

  枯草芽孢杆菌T4412 ade- his-、枯草芽孢杆菌TT2 ade-pro-

  ()、 培养基(配制方法见下一页附录)

  (1)、完全培养基(CM,液体)

  (2)、完全培养基(CM,固体) 液体培养基中加入2.0%琼脂;

  (3)、基本培养基(MM)

  (4)、补充基本培养基(SM) 在基本培养基中加入20 g/mL 的腺嘌呤及2%的纯化琼脂,75 Pa 灭菌20min

  (5)、再生补充基本培养基(SMR) 在补充基本培养基中加入0.5 mol/L 蔗糖,1.0%纯化琼脂作上层平板,2.0%纯化琼脂作底层平板、75 Pa 灭菌20 min

  (6)、酪蛋白培养基(测蛋白酶活性用)

  ()、 缓冲液:

  (1) 0.1mol/L pH 6.0 磷酸缓冲液。

  (2)、高渗缓冲液:于上述缓冲液中加入0.8 mol/L 甘露醇。

  ()、 原生质体稳定液(SMM)

  0.5 mol/L 蔗糖、20 mol/L MgC1 0.02 mol/L 顺丁烯二酸,调pH 6.5

  ()、 促融合剂:

  40%聚乙二醇(PEG-4000)SMM 溶液。

  ()、 溶菌酶液:

  酶粉酶活为4000 u/g,用SMM 溶液配制,终浓度为2 mg/mL,过滤除菌备用。

  ()、器皿:

  养皿、移液管、试管、容量瓶、锥形瓶、烧杯、离心管、吸管、显微镜、台式离心机、721 比色计、细菌过滤器。 

四、实验步骤

  ()、 原生质体的制备:

  1、培养枯草芽孢杆菌:

  取亲本菌株T4412TT2 新鲜斜面分别接一环到装有液体完全培养基(CM)的试管中,36℃振荡培养14 h,各取1 mL 菌液转接入装有20 mL 液体完全培养基的250 mL 锥形瓶中,36℃振荡培养 3 h,使细胞生长进入对数前期,各加入25 u/mL 青霉素,使其终浓度为0.3 u/mL,继续振荡培养2 h

  2、收集细胞:

  各取菌液10 mL4000 r/min 离心10 min,弃上清液,将菌体悬浮于磷酸缓冲液中,离心。如此洗涤两次,将菌体悬浮10 mL SMM 中,每mL 约含108109 活菌为宜。

  3、总菌数测定:

  各取菌液0.5 mL,用生理盐水稀释,取10-510-610-7 1mL(每稀释度作两个平板)、倾注完全培养基,36℃培养24 h 后计数。此为未经酶处理的总菌数。

  4、脱壁:

  二株亲本菌株各取5 mL 菌悬液,加入5 mL 溶菌酶溶液,溶菌酶浓度为100 ug/mL,混匀后于36℃水浴保温处理30 min,定时取样,镜检观察原生质体形成情况,当95%以上细胞变成球状原生质体时,用4000 r/min 离心10 min,弃上清液,用高渗缓冲液洗涤除酶,然后将原生质体悬浮于5 mL 高渗缓冲液中。立即进行剩余菌数的测定。

  5、剩余菌数测定:

  取0.5 mL 上述原生质体悬液,用无菌水稀释,使原生质体裂解死亡,取10-210-310-4 稀释液各0.1 mL,涂布于完全培养基平板上,36℃培养2448 h,生长出的菌落应是未被酶裂解的剩余细胞。

  计算酶处理后剩余细胞数,并分别计算二亲株的原生质体形成率。原生质体形成率=未经酶处理的总菌数一酶处理后剩余细胞数

  ()、 原生质体再生:

  用双层培养法,先倒再生补充基本固体培养基(SMR)作底层,取0.5 mL 原生质体悬液,用SMM作适当稀释,取10-310-410-5 稀释液各1mL,加入底层平板培养基的中央,再倒入上层再生补充半固体培养基混匀,36℃培养48 h。分别计算二亲株的原生质体的再生率,并计算其平均数。

  ()、 原生质体融合:

  取两个亲本的原生质体悬液各1 mL 混合,放置5 min 后,2500 r/min 离心10 min,弃上清液。于沉淀中加入0.2 mL SMM 溶液混匀,再加入1.8 mL PEG 溶液,轻轻摇匀,置36℃水浴保温处理2 min2500 r/min 离心10 min,收集菌体,将沉淀充分悬浮于2 mL SMM 液中。

  ()、 检出融合子:

  取0.5 mL 融合液,用SMM 液作适当稀释,取0.1 mL 菌液与灭菌并冷却至50℃的再生补充基本培养基软琼脂中混匀,迅速倾入底层为再生补充基本培养基的平板上,36℃培养2 d,捡出融合子,转接传代,并进行计数,计算融合率。

  ()、 融合子的筛选:

  挑选遗传标记稳定的融合子,凡是在再生补充基本培养基平板上长出的菌落,初步认为是融合子,可接入到酪蛋白培养基平板上,再挑选蛋白酶活性高于亲本的融合子。由于原生质体融合后会出现两种情况:一种是真正的融合,即产生杂核二倍体或单倍重组体,另一种只发生质配,而无核配,形成异核体。两者都能在再生基本培养基平板上形成菌落,但前者稳定,而后者则不稳定。故在传代中将会分离为亲本类型。所以要获得真正融合子,必须进行几代的分离、纯化和选择。

 

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