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录入时间:2010-12-22 9:38:22 来源:中国论文下载中心

 

  摘 要  目的:研究微生物改良法测定红细胞叶酸(RCF)的可靠性。方法:用本方法立博球探论坛不同疾病患者100例和健康自愿者50例的红细胞叶酸含量。对高、低两个质控标准的精密度、稳定性及实验相关性等指标进行评价。结果:本方法化学性能的评价表明:批内变异系数为2.228%3.620%,批间变异系数为5.12%7.51%。各厂家的试剂相关性良好(r=0.9544n=50)。50名健康自愿者测定结果表明RCF的正常参考值为586.3±69.6ng/mL。结论:本方法测定结果准确、可靠且操作简便,实验条件简单,适宜于推广。

    关键词  红细胞叶酸;微生物改良法;巨幼细胞贫血

    血液中的叶酸水平异常偏低,除与叶酸缺乏的巨幼细胞贫血有关外,还与胎儿神经管缺陷有关,引起同型半胱氨酸血症,可影响血管功能和增加卒中危险。因而血液中的叶酸水平的立博球探论坛受到高度重视。测定叶酸的方法基本上是微生物改良法和竞争结合两类,我们用微生物改良法对红细胞叶酸(RCF)进行了初步的研究。

    1 材料和方法

    1.1 材料

    1.1.1  菌株制备:购买耐氯霉素乳酸菌(NCIMB10463)冻干菌株。将冻干的菌株悬浮于5mL保养液37孵育18h;混匀取1滴加入新的5mL保养液,37孵育18h(该菌株可以在-4保存2W,用于菌株的繁殖)后;混匀取0.5mL加入5mL保养液,37孵育6h;用生理盐水清洗5次,最后用5mL生理盐水悬浮(简称清洗后6h菌株)。

    1.1.2  测量液:按培养基2.35g,氯霉素0.02gV-C0.1gTween-80110稀释)0.1mL,去离子水100mL的比例配制,以5mL为单位分装。

    1.1.3  保养液:每升测量液中加标准叶酸10mL,按5mL/支分装于无菌带塞试管,置-20可保存1年。标准叶酸浓度:10ng/mL

   1.3 测定样本

    ①定值高值质控标准=2.252ng/mL,低值质控标准=1.761ng/mL;分装后于-70保存,保证质控标准只冻融1次。②病人标本,不同疾病患者100例及健康自愿者50例,年龄25岁~40岁。所有标本均空腹,采肘静脉血2mL3mL,置EDTA干燥管内,按110比例稀释在1%V-C液中(称V-C血)于-20贮存。

    2 微生物测定法

    2.1.  按表1和表2操作配制孵育试管。表1 标准曲线管孵育前配制表2 红细胞叶酸标本孵育前配制

    2.2.  上述试管在37孵育18h后,摇匀,用721-分光光度计(在波长λ=660mm处)比浊。以叶酸浓度为横轴,以光密度值(OD值)为纵轴做出标准曲线。试管1和试管2OD值首先扣除同浓度空白对照管的OD值,然后由标准曲线查出该试管的叶酸值,标本的V-CRCFng/mL=(试管1叶酸值×0.04+试管2叶酸值×0.02/2。标本的红细胞叶酸值(RCF)按以下公式进行计算:RCFng/mL=[(V-CRCF×10/红细胞压积]ng/mL

    3 结果

    3.1 精密度实验

    取高、低值质控血清,平行测定20次,计算批内CV,低值血清CV=2.228%,高值血清CV=3.620%。连续测20d,计算批间CV,低值血清CV=5.12%,高值血清CV=7.51%

   3.2 稳定性实验

    按照菌株制备方法将冻干的菌株打开后,测定并绘制标准曲线图,测定高值、低值质控的RCF;同时用保养液使菌株长期保存。并分别在第3d7d14d20d30d50d75d100d使用保养液的菌株绘制标准曲线图,测定高值、低值质控的RCF值。高值质控的CV=5.18%、低值质控的CV=3.03%

3.3 相关实验

    50份标本同时用本法与美国DPC公司提供的进口的叶酸(固相非煮沸双相计数)放免试剂盒对RCF进行测定,相关系数r=0.9544 3.4 正常参考值

    选取50名年龄在25岁~40岁健康人标本用本方法进行红细胞叶酸测定,用平均值±两个标准差的方法进行统计计算正常参考值,测定结果表明RCF的正常参考值为(586.3±69.6ng/mL

    4 讨论

    叶酸在体内代谢极为重要的单碳转运中起着关键性作用。血液中的叶酸缺乏除与巨幼细胞贫血有关外,还与胎儿神经管缺陷有关,引起同型半胱氨酸血症[1] ,可影响血管功能和增加卒中危险 [23] 。由于红细胞内所含叶酸浓度比血清所含

    叶酸浓度高10倍~20倍,因而红细胞叶酸比血清叶酸更能代表组织内叶酸水平,当组织内叶酸水平已经缺乏,但尚未出现巨幼细胞贫血时,红细胞叶酸的测定对叶酸缺乏作出的决定更有价值 [4 ;而且血清叶酸的结果易受多种因素的影响,如:炎症、肝病、肿瘤等 [5] 。因此虽然血清叶酸降低代表早期叶酸缺乏,但红细胞叶酸减低,不受外来因素的影响,确实反映了组织叶酸水平的减低。

测定叶酸的方法基本上是微生物改良法和竞争结合法两类,后者操作简单、灵敏、但是价格昂贵,目前国内多数用于测定血清叶酸(SF)。当肝肾功能受损时,叶酸可以聚合。这种聚合体用竞争结合法不能测定(除非这种聚合被解开);但微生物改良法可以测定血液中总叶酸值(包括上述聚合体),因此用微生物改良法能满足临床测定肝、肾受损病人的总叶酸值。微生物改良法是经典的方法,材料来源广泛,并且用保养液可以使菌株长期保存。如果保存不当,致使菌株受杂菌污染或死亡,可以重新购买冻干菌株,十分简单便利地重新建立该实验;不需要购买特殊仪器;对仪器和实验条件要求较低;适用于大批标本测定。本实验观察了长期保存的菌株,其实验稳定性良好;与美国DPC公司提供的进口的叶酸(固相非煮沸双相计数)放免试剂相关性显著。因此便于在临床上推广使用。

作者:李建兰 杨波 冉家彦《长治医学院学报》

 

    参考文献

    1 Siri PWVerhoef PKok Fj.Vitamin B6B12a and folate:Associ-ation with plasmatotal homocysteine and risk of coronary at herosclerosisJ.J Am Coll Nutr1998175:435441.

    2 Robinson KArheart KRefsum Het al.Low circulating folate and vitamin B6concentrations:risk factors for strokeperipheral vascu-lar diseaseand coronary artery diseaseJ.Circulation199897:437443.

    3 Morrison HISchaubel DDesmeules Met al.Serum folate and risk of fatal coronary heart disease J.JAMA1996275:18931896.

    4 Hill PW.Evaluntion of a commercial radioisotopic kitfor folate as-says.J Clin Pathol197730:449.

5] 杨慧敏,陈觉凝,余灵,等.82名正常儿童红细胞叶酸、碱性铁蛋白水平测定及临床意义.中国小儿血液,19983:260.

 

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